Дерматофития собак и кошек


Дерматофития собак и кошек

Дерматофития – группа инфекционных заболеваний, поражающая верхние слои кожи, волосы  и когти. Возбудители – плесневые грибы аскомицеты родов Microsporum и Trichophyton используют кератин в качестве питательного субстрата. Насчитывается около 40 видов грибов, из них в ветеринарной медицине мелких домашних животных особенно важны 4 вида – M.canis, M.gypseum, T. mentagrophytes, поражающие стержень волоса  и M.persicolor, поражающий роговой слой кожи. По характеру среды обитания и, главное, условиям передачи хозяину дерматофиты подразделяются на зоофильные (источник заражения - животные) и геофильные (источник заражения – окружающая среда) (таблица 1).

Таблица 1.

Вид

Хозяева

Среда обитания

M.canis

Кошки, собаки, человек, лошади, грызуны

Зоофильный

M.gypseum

Собаки, кошки, лошади

Геофильный

T. mentagrophytes

Кошки, собаки, человек, грызуны

Зоофильный

M.persicolor

Собаки, кошки, грызуны

Зоофильный

Патогенез.

Самая частая причина дерматофитии собак и кошек  - M.canis. Встречается повсеместно. Передача возбудителя происходит контактным путем  с пораженными частичками волоса и кожи, предметами ухода. M.canis культивировали из пыли, вентиляционных фильтров [7].  Источником инфекции в большинстве случаев выступают кошки. Заражение грибами рода Trichophyton  и M.persicolor напрямую или косвенно связано с резервуарными хозяевами – грызунами.  M.gypseum – обитатель почвы, поэтому инфицирование характерно для животных, имеющих к ней доступ.

Инфекционным агентом служит атроспора, образуемая фрагментированными гифами. Инкубационный период в среднем составляет 7 – 14 дней. Механизм заражения связан с проникновением спор в волосяной фолликул в стадии анагена. Артроспоры адгезируются строго к кератину, повышенная влажность кожи облегчает процесс проникновения. Гифы мигрируют проксимально по поверхности волоса к луковице, продуцируя при этом кератолитические ферменты (кератиназу, эластазу, коллагеназу). Эти ферменты проникают через кутикулу волоса и прорастают до зоны кератогенеза. Волосы в стадии телогена продуцируют кератин медленно или не продуцируют его вообще, поэтому крайне редко могут поражаться. С этим явлением связано спонтанное выздоровление при дерматофитозах. Однако атроспоры могут сохраняться на поверхности волоса до наступления фазы анагена, что приводит к реинфекции. Такие факторы как возраст животного, его физиологический статус, количество и качество секрета потовых и сальных желез, характер роста волоса играют немаловажную роль в развитии болезни.

Дерматит у больных животных развивается под воздействием протеолитических ферментов грибов (за исключением M.persicolor, который поражает роговой слой); Trichophyton spp. способны вызывать акантолиз кератиноцитов [9]. Компоненты грибов могут вызывать реакции гиперчувствительности с развитием гуморального и клеточно-опосредованного иммунного ответа. Однако корреляции между циркулирующими антителами и защитой от инфекции не установлено. Лидирующим защитным фактором признан клеточно-опосредованный иммунный ответ, в пользу которого говорит более высокая встречаемость у иммуносупрессированных пациентов (раковые опухоли, FeLV, FIV, прием ГКС) [3,12].  

Длинношерстные животные заболевают чаще короткошерстных. Отмечена породная предрасположенность к дерматофитозам у персидских кошек, йоркширских и манчестер терьеров.

Клинические признаки.

Так как в первую очередь поражаются волосяные фолликулы, то клинические признаки будут связаны с проявлением фолликулита. В дерматологии собак отмечается гипердиагностика дерматофитии, так как демодекоз, поверхностная пиодерма мимикрируют под характерные «лишайные» поражения и часто упускаются ветеринарными врачами из виду.

Классические проявления дерматофитии связаны с локальной (иногда мультифокальной) алопецией и шелушением различной степени тяжести (рисунок 1,2). Инфекция чаще локализованная, максимально часто поражения отмечаются на морде, ушных раковинах, конечностях. Зуд варьируется от полного отсутствия или минимального до значительного особенно при развитии поверхностной пиодермы.  Онихомикоз – редкое явление, может быть представлен ассиметричной паронихией и ониходистрофией.  При генерализованной форме отмечаются себорее-подобные поражения, проявляющиеся сальной шерстью. К такой форме болезни кошки склонны больше, чем собаки.

Болезнь характерна для молодых животных до года, однако, столкнуться с ней можно в любом возрасте.

Рисунок 1,2. Очаги алопеции и шелушения у котят, больных M.canis

Дерматофития у кошек и собак

Дерматофития у кошек и собак

Собаки часто развивают классические округлые поражения с алопецией, шелушением, корочками, фолликулярными папулами и пустулами. В дифференциальной диагностике таких поражений следует учитывать все папуло-пустулезные болезни. Симметричные фолликулит или фурункулез области морды, спинки носа и лицевой части головы могут мимикрировать под аутоиммунные болезни  (пемфигус), особенно это касается поражений, связанных с возбудителями T. mentagrophytes и M.persicolor.

Керион – это хорошо очерченное, округлое, нодулярное проявление фурункулеза, чаще ассоциированное с грибами T. mentagrophytes и M.gypseum, в основном локализующееся на морде и конечностях. Рисунок 3.

 

Рисунок 3. Керион на морде собаки породы чихуа-хуа

Дерматофития у кошек и собак

Кошки более склонны к развитию участков алопеций с шелушением, волос в этих очагах обломан. Фолликулярный гиперкератоз может отмечаться в результате расширения волосяного фолликула или образования комедонов. Алопеции могут быть обширными со значительно выраженными воспалительными реакциями, эритемой, шелушением, корочками, фолликулярными папулами.  Дерматофития области подбородка может проявляться акне. Для кошек характерно безсимптомное носительство длительное время.

Псевдомицетома – это редкое проявление дерматофитиии, описанное у персидских кошек. Характеризуется одиночной или множественными подкожными нодулами, которыe могут изъязвляться [8]. (рисунок 4). Такие животные могут развивать как классические поражения на остальных частях тела, так и нодулы без других клинических проявлений.

Рисунок 4. Псевдомицетома у персидской кошки (из статьи Márcia de Oliveira Nobre, Eduardo Negri Mueller et al.)

Дерматофития у кошек и собак

 

 

Дерматофиты имеют зоонозный статус. К группе риска относятся дети, пациенты с раковыми опухолями или трансплантатами, иммунонекомпетенные и люди преклонного возраста. Клинические проявления у человека разнообразны и возникают на участках тела, контактирующих с шерстью животных (конечности, лицо, живот). 

Диагностика. Диагноз основывается на следующих методах:

  1. Люминисцентная диагностика при помощи лампы Вуда позволяет обнаружить M.canis, гифы которого содержат пигмент птеридин. В ультрафиолетовых лучах этот пигмент дает изумрудное свечение. Рисунок 5.

Рисунок 5. Характерное свечение волос в ультрафиолетовых лучах

Дерматофития у кошек и собак

Не следует забывать, что перед использованием лампу необходимо хорошо прогреть (5-10 минут), исследование должно проводиться в полностью темном помещении. Отрицательный результат не исключает инфекцию!  Святящиеся волоски удобно отбирать на микроскопию и посев.

  1. Микроскопия. Для исследования отбираются подозрительные волоски и чешуйки кожи. При положительном результате визуализируются волосы, пораженные гифами грибов. Рисунок 6.

Рисунок 6. Волос, пораженный гифами грибов

 

Дерматофития у кошек и собак

  1. Грибковая культура. Наиболее достоверный способ диагностики дерматофитозов, позволяющий не только получить культуру на среде, но и идентифицировать возбудителя до вида. Наиболее часто используемые в практике среды – среда Сабуро (в модификации) и DTM.

Для кошек, подозреваемых в носительстве, пользуются методом МакКензи – вычесывание стерильной зубной щеткой всей поверхности тела и дальнейший посев собранных образцов волос, кожных чешуек. Растущие колонии M.canis и Trichophyton spp. пушистые имеют цвет от белого до бледно-желтого. Рисунок 7,8.

 

Рисунок 7. Характерное изменение цвета среды DTM и характерные колонии  белого цвета M.canis

Дерматофития у кошек и собак

 

Дерматофития у кошек и собак

 

Средний рост колоний составляет от 7 до 30 дней. Для идентификации вида дерматофитов наносят на стекло каплю синей краски, помещают поверх скотч-отпечаток колонии,  микроскопируют. Макроконидии M.canis крупные, веретеновидные имеют толстые внутренние  перегородки, разделяющие конидию на 6 и более отсеков. Обычно имеют крышечку на головном конце. Макроконидии M. gypseum  не имеют крышечки на терминальном конце, внутренние перегородки тонкие, имеют меньшее количество отсеков. T.mentagrophytes характеризуется сигарообразными макроконидиями, которых может быть значительно меньше, чем макроконидий округлой формы.

К сожалению, при посевах отмечаются ложноотрицательные и ложноположительные результаты.

  1. Цитологическая диагностика возможна с нодулярных или мокнущих поражений. Проводится скотч-отпечатком с последующей окраской образца стандартными красителями. Чаще образец предствлен пиогранулематозным воспалением, с наличием спор грибов. Рисунок 9

Рисунок 9. Споры грибов в цитологическом образце

Дерматофития у кошек и собак

 

 

  1. Гистопатология. Наиболее диагностичный результат дает PAS окраска, которая позволяет прокрашивать гифы и споры внутри фолликула и эпидермисе. Не является рутинным методом, но гистопатологическое исследование незаменимо при подозрении на псевдомицетому.
  2. В последние годы стали доступны такие методы диагностики как ПЦР, иммуногистохимия, ELISA. Эти методы обладают хорошей диагностической ценностью, но повсеместно в практике не используются.

Лечение.


Дерматофитозы склонны к саморазрешению, однако, лечить больных необходимо в виду высокой контагиозности как для других животных, так и для человека.

Лечение заключается в использовании местных и системных средств.

Местное лечение в монорежиме не обладает достаточной эффективностью, так как препараты не способны проникать внутрь волоса и волосяного фолликула. Однако вместе с системными препаратами позволяет ускорить выздоровление и пресекает излишнее обсеменение окружающей среды патологическим материалом. Доказано эффективными местными средствами являются растворы энилконазола (Имаверол), сероводородной извести (Лайм Сульфур), шампуни на основе кетоконазола и миконазола.

Стрижка длинношерстных животных перед началом местного лечения позволяет удалить инфицированные волосы, предупреждая загрязнение окружающей среды и ускоряя процесс выздоровления.

Препараты для системного лечения представлены в таблицы 2.

Название 

Доза

Особенности применения

Кетоконазол

10 мг/кг 1 раз в сутки

Не рекомендован кошкам из-за гепатотоксичности

Итраконазол®

10 мг/кг 1 раз в сутки

Препарат выбора для лечения кошек. Можно использовать щенкам и котятам с двух месяцев

Тербинафин®

Собаки: 20-30 мг/кг 1-2 раза в сутки

Кошки: 20-40 мг/кг 1 раз в сутки-двое

Препарат выбора при лечение онихомикозов

 

® обладают накопительным действием за счет липо- и кератинофильности, что позволяет использовать препарты в пульс-терапии (один раз в неделю, одну неделю в месяце)

Лечить необходимо всех животных в контакте. Здоровых изолировать от больных и в качестве профилактики им можно использовать местные обработки.

Лечение отменяется после получения двух отрицательных результатов посева.

Обработка окружающей среды.

Волос, зараженный атроспорами  M.canis может сохраняться до 18 месяцев в окружающей среде [11].  Поэтому обработка среды обитания животных крайне необходима для успешного излечения. Для этого подходят следующие средства: 1% раствор хлорной извести, 0,6 % раствор энилконазола, свечи и дымовые шашки на основе энилконазола [1].

Профилактика.

Успешное использование противогрибковых вакцин хорошо зарекомендовало себя в лечении и профилактики дерматофитозов у продуктивных животных. Однако использование вакцин у животных-компаньонов не привело к ожидаемому успеху и является спорным [2,3,10].

В плацебо-контролированных исследованиях кошки, привитые инактивированным вакцинным штаммом, имели высокий титр Ig G (так же как и при естественной инфекции) и повышенную реакцию бласттрансформации лимфоцитов (но ниже, чем при естественной инфекции). Не смотря, на это все кошки в эксперименте развили дерматофитоз при инокуляции спор на кожу или при внедрении в колонии больных животных [8]. Разработка вакцин против дерматофитозов – перспективное направление, однако, на текущий момент данные за однозначную эффективность отсутствуют [4,5].

 

Список литературы:

Carlotti D.N., Guinot P. et al. Eradication of feline dermatophytosis in a shelter: a field study. Veterinary Dermatology //  21(3):259-66, 2010

DeBoer D.J., Moriello K.A. et al. Safety and immunologic effects after inoculation of inactivated and combined live-inactivated dermatophytosis vaccines in cats. American Journal of Veterinary Research // 63:1532–7, 2002

  1. Favrot C., Zaugg N. . Incidence, immunity and treatment of feline dermatophytosis. Schweiz Arch Tierheilkd // 147(5):205-12, 2005

Frymus T., Gruffydd J. et al. TDermatophytosis in cats: ABCD guidelines on prevention and management. Journal of Feline Medicine and Surgery // 15(7):598-604, 2013

  1. Lund A.E., DeBoer J.D. Immunoprophylaxis of Dermatophytosis in Animals. Mycopathologia // 166(5-6):407-24, 2008

Mancianti F., Papini R. Isolation of keratinophilic fungi from the floors of private veterinary clinics in Italy.  Veterinary Research Communications // 20: 161, 1996

  1. Moriello K.A. Management of dermatophyte infections in catteries and multiple-cat households.  Veterinary Clinics of North America: Small Animal // 20:1457, 1990

Nobre M.O., Mueller E.N. et al. Disease progression of dermatophytic pseudomycetoma in a Persian cat.  Revista Iberoamericana de Micología // 27(2):98–100, 2010

  1. Olivry T., Linder K.E. Dermatoses affecting desmosomes in animals: a mechanistic review of acantholytic blistering skin diseases. Veterinary Dermatology // 20(5-6):313-26, 2009
  2. Rybnika´rˇ A., Vrzal V., Chumela J. Vaccination of dogs and calves against Microsporum canis. Acta Veterinaria Brno // 65:161–4, 1996

Sierra P. et al. Fungal flora on cutaneous and mucosal surfaces of cats infected with feline immunodeficiency virus or feline leukemia immunodeficiency virus or feline leukemia virus.  American Journal of Veterinary Research //   61:158, 2000

  1. Sparkes A.H., et al. Acquired immunity in experimental feline Microsporum canis infection.  Research in Veterinary Science // 61:165, 1996

 

 

11.05.2016

Возврат к списку